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2實(shí)驗(yàn)動(dòng)物仙臺(tái)病毒檢測(cè)方法本文件規(guī)定了仙臺(tái)病毒(Sendaivirus,SV)的檢測(cè)方法。本文件適用于小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠、兔等實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的仙臺(tái)病毒的檢測(cè),或?qū)嶒?yàn)接種物、實(shí)驗(yàn)動(dòng)物環(huán)境樣本和動(dòng)物源性生物制品中仙臺(tái)病毒的檢測(cè)。2.規(guī)范性引用文件下列文件中的內(nèi)容通過(guò)文中的規(guī)范性引用而構(gòu)成本文件必不可少的條款。凡是注日期的引用文件,僅所注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本文件。GB/T14926.42實(shí)驗(yàn)動(dòng)物細(xì)菌學(xué)檢測(cè)標(biāo)本采集GB/T14926.50實(shí)驗(yàn)動(dòng)物酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)GB/T14926.51實(shí)驗(yàn)動(dòng)物免疫酶試驗(yàn)GB/T14926.52實(shí)驗(yàn)動(dòng)物免疫熒光試驗(yàn)GB/T14926.54實(shí)驗(yàn)動(dòng)物血凝抑制試驗(yàn)GB/T19495.2轉(zhuǎn)基因產(chǎn)品檢測(cè)實(shí)驗(yàn)室技術(shù)要求GB19489實(shí)驗(yàn)室生物安全通用要求SN/T5110-2019仙臺(tái)病毒病檢疫技術(shù)規(guī)范3.原理酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)/免疫酶試驗(yàn)(IEA根據(jù)免疫學(xué)原理,采用SV抗原檢測(cè)小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠、兔血清中仙臺(tái)病毒抗體,兩者形成的抗原抗體復(fù)合物可與相應(yīng)的酶標(biāo)二抗結(jié)合,在酶的催化作用下底物發(fā)生反應(yīng),產(chǎn)生有色物質(zhì)。顏色反應(yīng)的深淺與待檢血清中所含有的SV抗體的量成正比。免疫熒光試驗(yàn)(IFA采用SV抗原檢測(cè)小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠、兔血清中仙臺(tái)病毒抗體,兩者形成的抗原抗體復(fù)合物可與相應(yīng)的熒光素標(biāo)記的二抗結(jié)合,在紫外光或藍(lán)紫光的照射下,激發(fā)出可見(jiàn)的熒光,在熒光顯微鏡下以熒光的有無(wú)和強(qiáng)弱判定結(jié)果。血凝抑制試驗(yàn)(HAI在一定條件下,SV凝集雞、豚鼠紅細(xì)胞的能力可被特異性抗體所抑制。根據(jù)這一特性檢測(cè)小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠、兔血清中有無(wú)SV抗體。核酸檢測(cè):根據(jù)仙臺(tái)病毒保守序列基因,設(shè)計(jì)合成一對(duì)RT-PCR(reversetranscriptionpolymerasechainreaction,逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng))引物(和特異性探針)。提取樣本中的病毒RNA,通過(guò)逆轉(zhuǎn)錄酶將病毒RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,分別通過(guò)特異引物(和探針)在DNA3聚合酶作用下,經(jīng)過(guò)變性、退火和延伸三個(gè)步驟的循環(huán),進(jìn)行特異性擴(kuò)增目標(biāo)DNA片段,根據(jù)檢測(cè)結(jié)果判定樣品中是否含有仙臺(tái)病毒核酸。4.主要試劑和器材4.1.1ELISA抗原4.1.1.1特異性抗原用SV感染9d齡SPF雞胚尿囊腔,培養(yǎng)于36℃溫箱,72h后收凍于4℃,次日無(wú)菌收取尿囊液,4℃2000r/min離心10min,用0.5%雞或豚鼠紅細(xì)胞和SV陽(yáng)性血清做血凝和血凝抑制試驗(yàn),驗(yàn)證其病毒特異性和血凝效價(jià)。上清液再經(jīng)超速離心濃縮后制成ELISA抗原。4.1.1.2正??乖?d齡SPF雞胚尿囊液。4.1.2抗原片SV感染BHK21細(xì)胞,接種后2~3d,病變達(dá)++~+++時(shí)用胰酶消化分散,PBS洗滌,涂片。室溫干燥后,冷丙酮固定10min,-20℃保存。4.1.3血凝素見(jiàn)ELISA特異性抗原的制備。4.1.4陽(yáng)性血清SV抗原免疫SPF小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠或普通級(jí)兔所獲得的抗血清。4.1.5陰性血清SPF小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠血清和無(wú)仙臺(tái)病毒感染的兔血清。4.1.6酶結(jié)合物辣根過(guò)氧化物酶、堿性磷酸酶等標(biāo)記羊或兔抗小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠IgG抗體,用于檢測(cè)相應(yīng)動(dòng)物血清抗體;上述酶標(biāo)記羊抗兔IgG抗體,用于檢測(cè)兔血清抗體;上述酶標(biāo)記葡萄球菌蛋白A(SPA)可用于小鼠、豚鼠、地鼠、兔血清抗體的檢查。4.1.7熒光標(biāo)記物異硫氰酸熒光素、Dylight488等熒光標(biāo)記物標(biāo)記羊或兔抗小鼠、大鼠、豚鼠、地鼠IgG抗體,用于檢測(cè)相應(yīng)動(dòng)物血清抗體;用上述標(biāo)記物標(biāo)記羊抗兔IgG抗體,用于檢測(cè)兔血清抗體。4.1.8引物和探針4.1.8.1RT-PCR擴(kuò)增引物(參考SN/T5110-2019)4表1仙臺(tái)病毒RT-PCR引物序列4.1.8.2實(shí)時(shí)熒光RT-PCR擴(kuò)增引物和探針表2仙臺(tái)病毒實(shí)時(shí)熒光RT-PCR引物序列4.2器材4.2.1酶標(biāo)儀。4.2.2熒光顯微鏡。4.2.3普通顯微鏡。4.2.437℃培養(yǎng)箱或水浴箱。4.2.5實(shí)時(shí)熒光PCR儀。4.2.6PCR儀。4.2.7電泳儀4.2.8凝膠成像分析系統(tǒng)5.檢測(cè)方法5.1生物安全措施實(shí)驗(yàn)操作及處理按照GB19489的規(guī)定,由具備相關(guān)資質(zhì)的工作人員進(jìn)行相應(yīng)操作。5.2實(shí)驗(yàn)室總體技術(shù)要求實(shí)驗(yàn)室總體技術(shù)要求和檢驗(yàn)質(zhì)量控制的基本要求參考GB/T19495.2的規(guī)定5.3樣本采集及處理5.3.1血清的采集參見(jiàn)GB/T14926.424.3血清采樣。5.3.2臟器組織、盲腸內(nèi)容物或糞便、實(shí)驗(yàn)接種物、實(shí)驗(yàn)動(dòng)物環(huán)境樣本等的采集參見(jiàn)附錄A55.4采用ELISA方法(見(jiàn)GB/T14926.50)進(jìn)行血清學(xué)檢測(cè),或按照等效商業(yè)化ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。5.5采用IFA方法(見(jiàn)GB/T14926.52)進(jìn)行血清學(xué)檢測(cè),或按照等效商業(yè)化IFA試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。5.6采用IEA方法(見(jiàn)GB/T14926.51)進(jìn)行血清學(xué)檢測(cè),或按照等效商業(yè)化IEA試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。5.7采用HAI方法(見(jiàn)GB/T14926.54)進(jìn)行血清學(xué)檢測(cè),或按照等效商業(yè)化HAI試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。5.8采用PCR方法(見(jiàn)附錄A)進(jìn)行核酸檢測(cè),或按照等效商業(yè)化PCR試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè)。6.結(jié)果判定6.1ELISA/IFA/IEA對(duì)陽(yáng)性檢測(cè)結(jié)果,選用同一種方法或另一種方法重試。如仍為陽(yáng)性則判為陽(yáng)性。6.2HAIHAI抗體效價(jià)小于等于1:10判為陰性,大于1:10判為陽(yáng)性;對(duì)陽(yáng)性樣本,選用同一種方法重試,如為陽(yáng)性則判為陽(yáng)性。6.3RT-PCR結(jié)果判定對(duì)陽(yáng)性結(jié)果,用同一種方法或?qū)崟r(shí)熒光RT-PCR重試。如仍為陽(yáng)性,則判為陽(yáng)性。6.4實(shí)時(shí)熒光RT-PCR結(jié)果判定對(duì)陽(yáng)性或可疑結(jié)果,用同一種方法重試。如仍為陽(yáng)性或可疑,則判為陽(yáng)性。7.結(jié)果報(bào)告根據(jù)判定結(jié)果,出具報(bào)告。6(規(guī)范性附錄)仙臺(tái)病毒PCR檢測(cè)方法A.1主要設(shè)備和材料A.1.1實(shí)時(shí)熒光PCR儀A.1.2PCR儀。A.1.4凝膠成像分析系統(tǒng)。A.1.5Nanodrop紫外分光光度計(jì)。A.1.6高速冷凍離心機(jī)A.1.7臺(tái)式離心機(jī)。A.1.8恒溫孵育器。A.1.9漩渦振蕩器。A.1.10組織勻漿器或手持式均質(zhì)器。A.1.11生物安全柜。A.1.12PCR工作臺(tái)。A.1.13-80℃冰箱,-20℃冰箱,2~8℃冰箱。A.1.14微量移液器(10μL,100μL,1000μL)A.1.15無(wú)RNase和DNase的離心管(1.5mL、2mL、5mL、15mL無(wú)RNase和DNase的吸頭(10μL,200μL,1mL無(wú)RNase和DNase的PCR擴(kuò)增反應(yīng)管。A.2試劑除特別說(shuō)明外,以下實(shí)驗(yàn)用試劑均為分析純;實(shí)驗(yàn)用水為去離子水。A.2.10.02mol/LpH7.2磷酸鹽緩沖液(PBS)0.2mol/L磷酸二氫鈉溶液:稱取磷酸二氫鈉(NaH2PO4?H20)27.6g,先加適量去離子水溶解,最后定容至1000mL,混勻。A.2.1.2B液0.2mol/L磷酸氫二鈉溶液:稱取磷酸氫二鈉NaH2PO4·7H2O53.6g(或Na2HPO4·12H2O771.6g或Na2HPO4·2H2O35.6g),先加適量去離子水溶解,最后定容至1000mL,混勻。A.2.1.30.02mol/LpH7.2磷酸鹽緩沖液(PBS)的配制取A液14mL,B液36mL,加氯化鈉(NaCl)8.5g,加800mL去離子水溶解稀釋,用HCl調(diào)pH至7.2,最后定容至1000mL,經(jīng)121℃高壓滅菌15min,冷卻備用。A.2.2無(wú)DNase/RNase去離子水實(shí)驗(yàn)用去離子水按體積比0.1%加入DEPC搖勻,室溫靜置過(guò)夜,121℃高壓滅菌15min,冷卻備用。A.2.3RNA抽提試劑TRIzol或其他等效產(chǎn)品。A.2.4無(wú)水乙醇。A.2.575%乙醇(無(wú)DNase/RNase去離子水配制)。A.2.6三氯甲烷(氯仿)。A.2.7異丙醇。A.2.8逆轉(zhuǎn)錄試劑A.2.9PCR試劑:rTaq酶、10×PCRBuffer、dNTP。A.2.10DNA分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)。A.2.11TAE電泳緩沖液A.2.11.10.5mol/L乙二銨四乙酸二鈉(EDTA)溶液(pH8.0)乙二銨四乙酸二鈉(EDTA-Na2·H2O)滅菌去離子水5mol/L氫氧化鈉溶液滅菌去離子加至100mL,121℃,15min滅菌備用。A.2.11.250×TAE電泳緩沖液配制羥基甲基氨基甲烷(Tris)冰乙酸0.5mol/LEDTA溶液,pH8.0滅菌去離子加至1000mL,121℃,15min滅菌備用。用時(shí)用滅菌去離子水稀釋至l×使用。A.2.12溴化乙錠:10mg/mL溴化乙錠滅菌去離子水18.61g80mL調(diào)pH至8.0242gl00mL200mg20mL8A.2.131.5%瓊脂糖凝膠瓊脂糖1.5g1×TAE電泳緩沖液加至l00mL混合后加熱至完全融化,待冷至50℃~55℃時(shí),加溴化乙錠(EB)或其他等效核酸染料,輕輕晃動(dòng)搖勻后將瓊脂糖溶液倒入電泳板制成凝膠。A.2.14一步法反轉(zhuǎn)錄-熒光定量PCR試劑盒或等效試劑盒。A.2.15引物和探針:根據(jù)表1和表2的序列合成引物和探針,引物和探針加無(wú)RNase去離子水分別配制成20μmol/L儲(chǔ)備液,-20℃保存。A3樣本的采集A3.1臟器組織將活體動(dòng)物安樂(lè)死后剖檢,無(wú)菌采集動(dòng)物的肺、腸系膜淋巴結(jié)、肝臟、或脾臟,剪取待檢樣品2.0g于無(wú)菌離心管。A3.2盲腸內(nèi)容物或糞便無(wú)菌采集動(dòng)物盲腸內(nèi)容物或糞便,取待檢樣品2.0g于無(wú)菌離心管中。A3.3實(shí)驗(yàn)接種物直接取待測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)物、腫瘤組織等待測(cè)實(shí)驗(yàn)接種物于無(wú)菌離心管中。A3.4實(shí)驗(yàn)動(dòng)物環(huán)境樣本取適量實(shí)驗(yàn)動(dòng)物飼料和墊料置于無(wú)菌樣品袋中;取適量實(shí)驗(yàn)動(dòng)物飲水直接轉(zhuǎn)移到無(wú)菌離心管中;用無(wú)菌拭子拭取實(shí)驗(yàn)動(dòng)物籠具出風(fēng)口初效濾膜表面粉塵裝入無(wú)菌離心管中;取籠具系統(tǒng)內(nèi)置的出風(fēng)口粉塵吸附介質(zhì)裝入無(wú)菌離心管中;用無(wú)菌拭子拭取實(shí)驗(yàn)動(dòng)物環(huán)境中的待測(cè)位置后裝入無(wú)菌離心管中。A3.5樣本的運(yùn)輸和存放樣本采集后應(yīng)密封、加冰并盡快運(yùn)送到檢測(cè)實(shí)驗(yàn)室。在2~8℃條件下暫存應(yīng)不超過(guò)24h,若不能立即檢測(cè)應(yīng)-20℃保存,若需長(zhǎng)期保存,須置于-80℃冰箱,但應(yīng)避免反復(fù)凍融(凍融不超過(guò)3次)。A.4樣本RNA提取使用TRIzol或其他等效產(chǎn)品提取RNA,TRIzol對(duì)人體有害,使用時(shí)應(yīng)戴一次性手套,注意防止濺出。A.4.1取200μL處理后的樣本加1mLTRIzol后,充分混勻,室溫靜置10min使其充分裂9解。A.4.2按每毫升TRIzol加入200μL氯仿,蓋緊樣本管蓋,用手用力振蕩搖晃離心管15s;A.4.3離心后混合物分成三層:下層紅色的苯酚-氯仿層,中間層,上層無(wú)色的水樣層。RNA存在于水樣層當(dāng)中,水樣層的容量大約為所加TRIzol容量的60%。吸取上層水相至另一離心管中,注意不要吸取中間界面。A.4.4按每毫升TRIzol加入0.5mL異丙醇異丙醇混勻,室溫放置10min。4℃12000r/min離心10min,棄上清,RNA沉淀一般形成一膠狀片狀沉淀附著于試管壁和管底。A.4.5按每毫升TRIzol加入1mL75%乙醇,溫和振蕩離心管,懸浮沉淀。4℃7500r/min離心5min,棄上清,將離心管倒立吸水紙上,盡量使液體流干。A.4.6室溫自然風(fēng)干干燥5~10min,RNA樣本不要過(guò)于干燥。A.4.7用50~100μL無(wú)RNase去離子水溶解RNA樣品,制備好的RNA應(yīng)盡快進(jìn)行下一步PCR反應(yīng);若暫時(shí)不能進(jìn)行PCR反應(yīng),應(yīng)于-80℃冰箱保存?zhèn)溆?。A.5RT-PCR檢測(cè)A.5.1RNA逆轉(zhuǎn)錄RNA逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系見(jiàn)表3。反應(yīng)液的配制在冰浴上操作,反應(yīng)條件為37℃、15min;表3RNA逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系28A.5.2PCR反應(yīng)普通PCR反應(yīng)體系見(jiàn)表4。反應(yīng)液的配制在冰上操作,每次反應(yīng)同時(shí)設(shè)置陽(yáng)性對(duì)照、陰性對(duì)照和空白對(duì)照。表4PCR反應(yīng)體系25A.5.3PCR反應(yīng)參數(shù)PCR反應(yīng)參數(shù)見(jiàn)表5表5普通PCR反應(yīng)參數(shù)11A.5.4RT-PCR產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)和拍照RT-PCR反應(yīng)結(jié)束后,取10μLPCR產(chǎn)物在1.5%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測(cè)。電泳完成后用凝膠成像系統(tǒng)拍照記錄電泳結(jié)果。A.5.5RT-PCR結(jié)果判定陰性對(duì)照和空白對(duì)照未出現(xiàn)條帶,陽(yáng)性對(duì)照出現(xiàn)預(yù)期大小(490bp)的目的擴(kuò)增條帶,則滿足質(zhì)控要求;否則此次試驗(yàn)無(wú)效,需重新測(cè)試。A.5.5.1質(zhì)控成立條件下,樣本未出現(xiàn)預(yù)期大?。?90bp)的擴(kuò)增條帶,則可判定為陰性。A.5.5.2質(zhì)控成立條件下,樣本出現(xiàn)預(yù)期大?。?90bp)的擴(kuò)增條帶,則可判定為陽(yáng)性。A.5.5.3序列測(cè)定必要時(shí),可取待檢樣本擴(kuò)增出的陽(yáng)性PCR產(chǎn)物進(jìn)行核酸序列測(cè)定,序列結(jié)果與已公開(kāi)發(fā)表的仙臺(tái)病毒特異性片段序列進(jìn)行比對(duì),序列同源性在95%以上,可判定為陽(yáng)性,否則判定為陰性。A.6實(shí)時(shí)熒光RT-PCRA.6.1實(shí)時(shí)

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