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文檔簡介
1、BlueNativePAGE一.實(shí)驗(yàn)原理:BlueNativePAGE(BN-PAGE是HermannSchagger1991年創(chuàng)立的一種從生物樣品(質(zhì)膜,胞漿等)中分離蛋白質(zhì)復(fù)合物的電泳技術(shù)。能分離10KD-10MKD范圍內(nèi)的蛋白質(zhì)以及蛋白質(zhì)復(fù)合物。BN-PAGE以考馬斯亮藍(lán)G-250代替SDS使蛋白質(zhì)復(fù)合物帶負(fù)電荷,根據(jù)各個不同復(fù)合物分子量不同從而在膠中得到分離。這些復(fù)合物在膠中以藍(lán)色條帶形式呈現(xiàn)。樣品用一些溫和的去污齊如dodecylmaltoside(DM),TritonX-100和毛地黃皂昔(digitonin)等溶解,從而使復(fù)合物以近似天然的狀態(tài)分離。實(shí)驗(yàn)中若想進(jìn)一步分析復(fù)合物各個
2、亞基的成分,通常采用BN-PAGE合SDS-PAGE方式.實(shí)驗(yàn)結(jié)果如下圖所示。-PO-III10.0002.500kDa1.000700490aoo130!/IIIVBN-WGEO二實(shí)驗(yàn)需要用到的試劑:咪口坐(Imidazole),6-氨基乙酸(6-Aminohexanoicacid),聚丙烯酰胺(Acrylamide(twice-crystallized),甲叉雙丙烯酰胺.(Bis-acrylamide(twice-crystallized),20%(W/V)TritonX-100,20%(W/功dodecylmaltoside(DM),20%(WN)digitonin,甘油,5%(W/V)
3、G-250(CoomassieblueG-250),前基乙醇(.Mercaptoethano),過硫酸俊(AP),TEMED氯化鈉三溶液的配置AB-3mix:稱48gacrylamide加入大約50mL的ddH2O中,攪勻后定容至100mL,再加入1.5gbisacrylamide,混勻,三層濾紙過濾后置于棕色瓶中保存。5%G-250容液:0.5gG-250,0.6559g6-氨基乙酸溶于10毫升水中電極緩沖液和凝膠緩沖液的配方見表TABLE1|ElectrodeandgelbuffersforBN-PAGEHCathodebufferBCathodebufferH/10Anodebuffer
4、Geibuffer(3x)Tricine(mM)5050-Imidazole(mH)7.57.52575CMTTiassieblueG-250(%)0.020.002-6-Aminohexanoicarid(M)一-一1.5pH*7,0*7"九0b7。樣品溶解液的配方見表2TABLE2|SoLubilizarionbuffersforBN-PAGE.SolubilizationbufferASolubiLizationbufferBSodiumchlorklemM)50一Imidazole/HCl(mM)50506-Aminohexanoicacid(mM)2500EDTA(mM)1
5、1pH(at4JC)7.07,0分離膠和濃縮膠的配方見表3TABLE3|CompasitionofasampiegelandandIT/;:acrylamidemirtuiEstopreparemacrylamidegrsdientgel.SamplegelGradientsepaRtiongel3.5%acrtamide4%acrytamide13%mw加mi加AB-3mix0.44ml1.5ml3.9mlGelbuffer2ml6ml5mlGlycerol3g,Vater3.4ml10.4mL3ndTotalvolume6ml18ml15ml10%APS50pl100lil75plTEME
6、D5W10pl7.5iA四實(shí)驗(yàn)流程:1.灌膠選擇合適的玻璃板,用洗滌劑反復(fù)擦洗玻璃板,再用自來水反復(fù)沖洗,最后用雙蒸水漂洗,自然晾干或者用吹風(fēng)機(jī)吹干。隔條以同樣的方法洗干凈以后,自然晾干或用濾紙吸干。將玻璃板卡入隔條中,短板對負(fù)極置于電泳槽中,用1%勺瓊脂糖封膠。將電泳槽放在4度冰箱中冷卻。按照表上所列的方法配好不同濃度的分離膠,用梯度混合儀灌膠。灌完膠后,用水飽和的正丁醇封住膠面,等待凝膠聚合。大約30分鐘后,凝膠的表面出現(xiàn)兩個界面,分離膠已經(jīng)聚合,去掉表面的正丁醇層和水層,再用雙蒸水沖洗膠面,直到?jīng)]有正丁醇的味道為止。用濾紙小心的吸干膠面。按照表中的方法配好濃縮膠,灌膠,插入梳子,等待凝膠
7、聚合。2樣品處理不同的樣品有不同的處理方法。現(xiàn)在以海馬突觸質(zhì)膜為例講解樣品處理方法。從-20度冰箱里取出一管用1.5mLEPf裝著的海馬突觸質(zhì)膜樣品,置于37度水浴鍋中使其快速溶解。溶解后加入表二所示的solutionbufferA溶液,加到EPf最大刻度處。18000g冷凍離心20分鐘,棄上清,取沉淀。稱沉淀的重量。按照detergent/protein=3:1的比例加入20%TritonX-100溶液,使TritonX-100的終濃度為2%用Tip頭小心混勻樣品,注意不能有氣泡,冰上裂解30分鐘。然后18000g冷凍離心20分鐘,收集上清,測蛋白含量。取出120微克的樣品,加入3微升5%G
8、-250溶液和5微升50%的甘油,混勻后即可上樣。所有操作均在冰上進(jìn)行。3電泳將處理好的樣品用微量進(jìn)樣器點(diǎn)在上樣孔中以后,倒入1x負(fù)極液和正極液,插好電源,以恒壓100V開始電泳,待樣品跑過濃縮膠后,電壓改為250V,之后可以慢慢增大,到樣品最后跑完。只要控制電流在50毫安以內(nèi)即可。待樣品跑到凝膠的1/3處更換負(fù)極液,將原來1x負(fù)極液換成1/10x,這樣可以降低膠的背景。負(fù)極液的配方見表一。電泳過程如下圖所示:BeforeDuringAfter4固定和染色當(dāng)樣品跑完整個凝膠后,剝膠,固定和染色。這個過程和普通的SDS交一樣。即用固定液(50%ddH2O,40%甲醇,10%乙酸)固定30分鐘后,
9、水洗4次,15分鐘一次。然后在考染液中染色過夜。5脫色,掃描染色過夜后,倒掉考染液,用雙蒸水脫色,到背景十分干凈為止,掃描。如果不要分析復(fù)合物各個亞基的組分,就可以直接拿BlueNative膠切膠,酶解后質(zhì)譜鑒定。若還想進(jìn)一步分析復(fù)合物各個亞基的組成,則還要做二向SDS-PAGE五二向SDS-PAGE作過程1灌膠選擇合適的玻璃板,洗干凈后按照上述方法灌膠。SDS-PAGE30凝膠儲液,分離膠buffer,濃縮膠buffer的配制見實(shí)驗(yàn)室自編教材蛋白質(zhì)組學(xué)核心技術(shù)實(shí)踐指南,凝膠濃度根據(jù)樣品特性選擇合適的濃度,凝膠濃度與其對應(yīng)的分離范圍見表3.1。表31凝膠濃度與其對應(yīng)的分離范圉本實(shí)驗(yàn)室常用的分離
10、膠的濃度為11.5%,濃縮膠的濃度為4.8%,配方如下:膠法度分離范圍(KD)5%36-2007.5%24-20010%14-20012.5%14-10015%14-6011.5%分離膠4.8%濃縮膠30%!膠儲液5.750.8分離膠bufferP3.75濃縮膠膠buffer1.25雙蒸水5.5毫升2.95AP140微升20微升TEMED10微升5微升電極緩沖液的配置:Tris(MW121.14)3.03g,甘氨酸(MW75.0714.4g,SDS1g,加雙蒸水至1000ml2平衡將BlueNative膠根據(jù)條帶的位置切成長條,置于含有1%SDS1海基乙醇溶?中平衡2小時,水洗20分鐘。3轉(zhuǎn)移
11、先煮瓊脂糖(0.05g瓊脂糖,10毫升電極緩沖液,30微升澳酚藍(lán)),然后將平衡好的膠條擺在二向SDS膠的濃縮膠膠面上,用壓膠片把膠條壓緊,使二者緊密結(jié)合,并保證兩個膠面之間沒有氣泡,再向膠面上封一層瓊脂糖。4跑膠等瓊脂糖凝固后,將玻璃板擺到電泳槽上,倒入電極緩沖液,以25毫安恒流開始電泳。等樣品跑過濃縮膠后,將電流改為45毫安直到電泳結(jié)束。5銀染固定液(100毫升乙醇,25毫升乙酸,125毫升雙蒸水)固定30分鐘將固定液倒掉,加入敏化液(0.5g硫代硫酸鈉,17乙酸鈉,75毫升乙醇,最后定容至250毫升)敏化30分鐘倒掉敏化液,加入雙蒸水洗3次,每次5分鐘倒掉水,加入銀染液(0.625g硝酸銀
12、加水至250毫升)染色20分鐘倒掉染色液,水洗兩次,每次1分鐘倒掉水,加入顯影液(6.25g碳酸鈉,50微升甲醛溶于250毫升水中),3-5分鐘以后即可看到結(jié)果倒掉顯影液,快速加入終止液(3.65gEDTA溶于250毫升水中)終止20分鐘倒掉終止液,加入雙蒸水洗膠面注意:每步之間都要換干凈手套,銀染液配好后要避光。6掃描Tips:1樣品處理是整個實(shí)驗(yàn)的關(guān)鍵,樣品處理最重要的是去污劑的濃度以及去污劑和蛋白的比例,這個通常需要摸索,設(shè)置不同的濃度以及比例,最后選擇最佳的。下圖就是一個例子。ADigitonin(mM)g6-bM(eM)toolowrighttoohightoolowrrghttooDigit4nin(mM)£)B-DW(eM)toolowrightt
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